分布较广；澳洲、欧洲、日本、北美、南美和南非都有报道。
藜草花叶病毒
百科内容来自于：
分布
寄主植物
自然寄主范围很窄，主要是藜科植物，很多都是产生褪绿斑驳，但是欧洲也发现很多果树和葡萄也感染藜草花叶病毒。有实验证明葡萄藤的分离株可经实验方法侵染其它科植物（Bercks&Querfurth，1969）。
Chenopodium spp：叶片褪绿斑驳
Vitis spp.，Prunusdomestica：几乎不侵染
Atriplex suberecta：矮化，叶片变形
实验寄主范围和症状
苋色藜（ChenoPodbo amaranticoI）：机械接种的植株先出现褪绿局斑（图3） 然后出现黄色斑点和星状病斑（图1、2）。经种子感染的植株出现斑驳和斑点症状，也可能不表现任何症状。单用水或缓冲液润湿的手指抹擦叶片，不可能引起病害症状（Dias &Whterwort，1967；Engelbrecht &van Regenmortel，1968）
昆诺藜和墙生藜的症状与苋色藜的症状相似。
甜菜（Beta vulgaris）非常轻微的系统花叶。
繁殖寄主
苋色黎、昆诺藜或墙生藜都适于保存病毒。
菠菜（SPinacia oleracea）是纯化病毒的良好材料。
鉴定寄主
苋色藜和昆诺藜都出现局斑，但是否适于作为鉴定寄主，还未曾试验。
危害情况
不少藜属植物产生褪绿斑驳，其中许多种类可作为其他植物病毒的实验测定寄主。实验植物，如苋色藜（ChenoPodbo amaranticoI）、昆诺藜（C.quinoa）和墙生藜（C.murale），都可带这种病毒，但经种子传播无症状表现。
经济重要性
SoMV在杂草的经济影响较小。栽培作物和观赏植物很少受到病毒侵染，经济作物如被侵染，症状一般为和性花叶或无症状。
形态特征
质粒结构
RNA病毒，质粒等轴对称，无包膜，直径 2 6nm。叶子汁液含有很多病毒粒子。有些分离物病毒粒子在pH4的条件下比pH7更稳定。经磷钨酸或醋酸铀染色的质粒的电镜照片分辨不出任何形态亚基（图4），
只有一种沉降组分。高度稀释下的沉降系数s（20，w）：104±2S
分子量：6．3 ± 0．4 × 106（Kado&Black，1968）。
扩散系数：（D20/10-7厘米2/秒）：l．2 9（根据 Kado计算，未发表）；1.15（Paul&
Huth，1970）。
等电点：PH4．4。
部分比容（计算）0.70 ±0.05厘米3/克。
260毫微米吸收值（毫克/毫升，1厘米光程）：4.9。
260/280比值（未校正光散射）：1.49；230/260比值；1.67。
质粒组成
RNA：分予量约1.3 ×106，约占质粒重的 2 0%，可能是单链。核苷酸的克分子百分比：G 26.0，A 23.2，C 27.6，U 23.2。
蛋白质：
质粒仅含一种蛋白质亚基。C末端氨基酸是赖氨酸，N末端封闭。氨基酸组成（克分子%）： 丙氨酸8.5；精氨酸4.6；天冬氨酸9.1；半胱氨酸1.1；谷氨酸6.8；甘氨酸9.1；组氨酸1.7；异亮氨酸5.1； 亮氨酸6.8；赖氨酸6.8；甲硫氨酸2.8；苯丙氨酸2.3；脯氨酸6.8；丝氨酸8.0；苏氨酸7.4；色氨酸1.7；酪氨酸4.0；缬氨酸7．4（Kado，1967）根据氨基酸分析提出，蛋白质亚基的分子量为 l．92× 104（Kado，1967）。根据中性十二烷基硫酸钠/聚丙烯酸胺凝胶电泳指出，蛋白质亚基的分子量可能等于3.1× 104（Hill，1971）。
汁液稳定性
昆诺藜汁液中，病毒热钝化点（10分钟）约90 ℃，稀释限点约10-7。在23℃下保持侵染性约60天。在冰冻条件下，侵染性可长期保持。
生物学
株系
所有分离株的血清学反应都一致。这些分离株包括：KirkPatriok等（1965）及 Bancroft和 Tolin（1967）的苹果隐症病毒；Holling和 Stone（1967）的香石竹 698号分离株；Silye等（1958）的藜花叶病毒；Kado（1966；1967）的藜星斑病毒；Teakle（1968）的鱼草（ChenoPodlum trigonon）病毒；葡萄藤的分离株（Bercks&Querfurth，1969）。除了葡萄藤分离株外，其它所有的分离株都很相似，因为葡萄藤分离株可经实验方法感染苋科、葫芦科、豆科和茄科植物
血清学
病毒的免疫原性很强。缓冲液含1%琼脂或琼脂糖凝胶的双扩散试验，试管中的沉淀试验，1%琼脂或琼脂糖凝胶的免疫电泳试验，都可以用。通常在凝胶双扩散试验和免疫电泳试验中，形成一条沉淀带。试管沉淀试验中，沉淀呈颗粒状。
亲缘关系
未检出该病毒与下列病毒之间有血清关系：苜蓿花叶病毒、南芥草花叶病毒、菜豆荚斑驳病毒、蚕豆斑驳病毒、豇豆花叶病毒、黄瓜花叶病毒、黄瓜花叶病毒Y毒株、葡萄扇叶病毒、桃黄芽花叶病毒、南方菜豆花叶病毒，南瓜花叶病毒、烟草坏死病毒、番茄斑萎病毒、芜青黄花叶病毒和野黄瓜花叶病毒。
病毒与细胞和组织的关系
所有的组织都能感染病毒。细胞质内的病毒呈膜包裹的晶状排列，引起"假核仁"一致密、环形、粒状的小区（Milne，1967）。
细胞病理学
病毒颗粒在叶肉细胞和木质部都有发现，但在韧皮部没有发现病毒粒体。在单个的细胞中病毒存在于细胞质和液泡中。受侵染细胞的内含体在细胞质中呈晶体状
纯化
每公斤接种的叶组织可得病毒200～500毫克。
下列两种方法均可采用：
1．Kado（1967）的方法：用 pH7.5的 0.05M二乙胺四乙酸钠研磨冰冻组织。过滤后，加入0．5倍体积的冷正丁醇，搅拌，经离心使乳浊液澄清。吸出上层的正丁醇，用玻璃棉过滤液相。高低速离心5次，使病毒浓缩，将病毒沉淀再悬浮在PH7.0的0.1M磷酸缓冲液中。
2.Steer（1956）的丁醇一氯仿法。
传播途径
介体传播
据报道，豌豆潜叶蝇（Liriomyza langei）、甜菜叶蝉（Circulifer tenellus）一种蝽（Halticus citri）和桃蚜（Myzus Persicae）都可能是介体（Bennet& Costa，1961）。然而Dias和Waterworth）没能证实桃蚜传毒。
种子传播
病株子代幼苗的感染率高达83%，感染率的高低取决于种子的取样（Bennett&Costa，1961；Dias&waterworth，1967 ；Kado，1967）。通过种子而感病的植株很少出现症状，甚至毫无症状。
菟丝子传播
加州菟丝子（cuscuta californica）不传毒，它显然对感染是免疫的（Bennett&Costa，1961）。
检疫与防治
检测方法
因为SoMV经常是潜隐或症状较轻，检测时要转接到无SoMV的指示植物如苋色藜、昆诺藜，然后进行血清学检测，或者是以血清学方法在初始寄主上检测。检测系统侵染的寄主如Chenopodium spp,因为病毒含量很高，较易检测，而在另外一些寄主上，因病毒含量很低且移动很慢，即使用DAS-ELISA检测也较为困难(Cardin et al., 1995)。
防治
很多时候，因为SoMV只产生很轻的症状，发作也是零星的发作，因此认为对其的控制不是很重要。它能引起的问题是污染苋科指示植物的种子，使其无症带毒，这会给以后的研究带来不便。
无化学或其他控制介体的方法。
注
藜属植物的种子可能携带藜花叶病毒，这一事实表明，当这些品种的植物作为其它病毒的寄主时，会出现污染的问题，尤其因为感病的子代幼苗可能不出现什么症状。所以，从表面上看似乎不带藜花叶病毒的植株上收集种子时，务须谨慎。
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